Determinación de la presencia de anticuerpos hacia diversos agentes patógenos en cerdos de granjas a pequeña escala en el centro de México Anticuerpos contra patógenos porcinos en granjas a pequeña escala

Contenido principal del artículo

Rosalba Carreon Napoles
Allison Valeria González López
Roberto Gustavo Martínez Gamba
Mario Enrique Haro Tirado
Omar Olvera de la Cruz

Resumen

La presencia de patógenos que afectan al tracto respiratorio del cerdo es frecuente en poblaciones porcinas de todo el mundo y su importancia radica en el impacto económico que ocasionan, debido a su alta morbilidad, posible mortalidad y pérdidas productivas. Las granjas porcinas de pequeña escala (GPE), al operar con limitadas condiciones de bioseguridad, podrían favorecer la circulación y diseminación de patógenos respiratorios, afectando su productividad. El objetivo de este estudio fue determinar la presencia de anticuerpos contra Actinobacillus pleuropneumoniae (App), Mycoplasma hyopneumoniae (Mhyo), el virus del Síndrome Reproductivo y Respiratorio Porcino (PRRS) y el virus de Influenza porcina (IP [H1N1 y H3N2]) en cerdos de GPE ubicadas en el centro de México. Se recolectaron 66 muestras sanguíneas de cerdos en distintas etapas productivas en seis granjas con producción de ciclo completo, y se analizaron mediante pruebas serológicas. Las frecuencias de seropositividad fueron IP H1N1 (92.4%), App (43.9%), IP H3N2 (40.9%), Mhyo (39.4%) y PRRS (13.6%). Se observó una asociación significativa entre la seropositividad a App y la etapa productiva (P<0.01), con mayor frecuencia en cerdas reproductoras y de reemplazo. También se identificaron asociaciones serológicas entre Mhyo e IP H3N2 (P=0.02), y entre IP H3N2 y PRRS (P<0.01). Estos hallazgos evidencian una alta exposición a patógenos respiratorios en GPE, atribuible a la falta de medidas sanitarias y de manejo adecuadas. Se destaca la necesidad de fortalecer la vigilancia epidemiológica y la extensión veterinaria para mitigar los riesgos sanitarios y productivos en estas unidades.

Palabras clave:
Patógenos respiratorios porcinos, Seroprevalencia en cerdos, Granjas porcinas de pequeña escala, Vigilancia epidemiológica veterinaria, Enfermedades respiratorias porcinas

Detalles del artículo

Biografía del autor/a

Rosalba Carreon Napoles

<p>Departamento de Medicina y Zootencia de Cerdos.</p><p>Acadèmico</p>

Citas

Martínez RG, Herradora MA, Montero EM, Ramírez G, Espinosa S, Sánchez M, et al. Alternativas para la producción porcina a pequeña escala. Ciudad de México, México: Universidad Nacional Autónoma de México; 2015. 208 pp.

Kim SW, Gormley A, Jang KB, Duarte ME. Current status of global pig production: an overview and research trends. Animal Bioscience. 2024;37(4):719–729. doi.org/10.5713/ab.23.0367. DOI: https://doi.org/10.5713/ab.23.0367

Martins FM, Trienekens J, Omta O. Implications of horizontal and vertical relationships on farmers performance in the Brazilian pork industry. Livestock Science. 2019;228:161–169. doi.org/10.1061/j.livsci.2019.08.013. DOI: https://doi.org/10.1016/j.livsci.2019.08.013

Knox R. Worldwide perspective for swine production and reproduction for the next 20 years. Theriogenology. 2025;234:24–33. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2024.11.020

Barrios Melgar C. Propuesta de un sistema de producción híbrido alternativo para porcicultura a mediana y pequeña escala (tesis de maestría). Ciudad de México, México: Universidad Nacional Autónoma de México; 2015.

García Galván A. Diseño e implementacion de formularios de registro para el manejo de base de datos para el análisis de la producción en granjas porcinas de pequeña escala (tesis de licenciatura). Ciudad de México, México: Universidad Nacional Autónoma de México; 2019.

Loeffen WLA, Kamp EM, Stockhofe-Zurwieden N, Van Nieuwstadt APKMI, Bongers JH, Hunneman WA, et al. Survey of infectious agents involved in acute respiratory disease in finishing pigs. Veterinary Record. 1999;145(5):123–129. doi.org/10.1136/vr.145.5.123. DOI: https://doi.org/10.1136/vr.145.5.123

Cannon RM, Roe RT. Livestock disease surveys. A field manual for veterinarians. Canberra: Australian Government Publishing Service; 1982.

Snyder ML, et al. Microtitration hemagglutination inhibition test for swine influenza virus (SIV). In: US Department of Agriculture Animal and Plant Health Inspection Service Veterinary Services. Serologic microtitration techniques. Ames, Iowa: National Veterinary Services Laboratories; 1981. pp. 32–34.

Wendel HA, Snyder MT, Pell S. Trial of amantadine in epidemic influenza. Clinical Pharmacology and Therapeutics. 1966;7(1):38–43. doi.org/10.1002/cpt19667138. DOI: https://doi.org/10.1002/cpt19667138

Stärk KDC. Epidemiological investigation of the influence of environmental risk on respiratory diseases in swine. Veterinary Journal. 2000;37–56. doi.org/10.1053/tvjl.1999.0421. DOI: https://doi.org/10.1053/tvjl.1999.0421

Garrido-Mantilla J, Sanhueza J, Alvarez J, Culhane MR, Davies P, Allerson MW, et al. Impact of nurse sows on influenza A virus transmission in pigs under field conditions. Preventive Veterinary Medicine. 2021;188:105257. doi.org/10.1016/j.prevetmed.2021.105257. DOI: https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2021.105257

Loera VM, Loera A, Morfín M, Jacques M, Avelar FJ, Ramírez F, et al. Porcine respiratory pathogens in swine farms environment in Mexico. Open Journal of Animal Sciences. 2014;04(04):196–205. doi.org/10.4236/ojas.2014.44025. DOI: https://doi.org/10.4236/ojas.2014.44025

Loeffen WLA, Hunneman WA, Quak J, Verheijden JHM, Stegeman JA. Population dynamics of swine influenza virus in farrow-to-finish and specialised finishing herds in the Netherlands. Veterinary Microbiology. 2009;137(1–2):45–50. doi.org/10.1016/j.vetmic.2009.01.004. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2009.01.004

López G, Montalvo M, Burgara A, Hernández J. Serological and molecular prevalence of swine influenza virus on farms in northwestern Mexico. Veterinary Microbiology. 2014;172(1–2):323–328. doi.org/10.1016/j.vetmic.2014.05.017. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2014.05.017

Loera A, Avelar FJ, Loera VM, Jacques M, Guerrero AL. Presence of Actinobacillus pleuropneumoniae, Streptococcus suis, Pasteurella multocida, Bordetella bronchiseptica, Haemophilus parasuis and Mycoplasma hyopneumoniae in upper respiratory tract of swine in farms from Aguascalientes, Mexico. Open Journal of Animal Sciences. 2013;03(02):132–137. doi.org/10.4236/ojas.2013.32020. DOI: https://doi.org/10.4236/ojas.2013.32020

Pacce VD, de Oliveira NR, Jorge S, Dellagostin OA. Occurrence of Mycoplasma hyopneumoniae in slaughter pigs from southern Brazil. Brazilian Journal of Veterinary Research and Animal Science. 2019;56(1):1–5. doi.org/10.11606/issn.1678-4456.bjvras.2019.150072. DOI: https://doi.org/10.11606/issn.1678-4456.bjvras.2019.150072

Albina E. Epidemiology of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS): an overview. Veterinary Microbiology. 1997;55(1–4). doi.org/10.1016/s0378-1135(96)01322-3. DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-1135(96)01322-3

Gerber PF, O´Neill K, Owolodun O, Wang C, Harmon K, Zhang J, et al. Comparison of commercial real-time reverse transcription-PCR assays for reliable, early, and rapid detection of heterologous strains of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in experimentally infected or noninfected boars by using different. Journal of Clinical Microbiology. 2013;51(21):547–556. doi.org/10.1128/JCM.02685-12. DOI: https://doi.org/10.1128/JCM.02685-12