Evaluación del grado de concordancia entre los resultados del examen histopatológico y del cultivo bacteriológico en el diagnóstico de tuberculosis bovina en México

Contenido principal del artículo

Jacob Carrisoza-Urbina
Estela Flores-Velázquez
José A. Gutiérrez-Reyes
Noé Orlando Juárez-López

Resumen

Veterinaria México OA
ISSN: 2448-6760

Cómo citar este artículo:

  • Carrisoza Urbina J, Flores Velázquez E, Gutiérrez Reyes JA, Juárez López NO. Evaluación del grado de concordancia entre los resultados del examen histopatológico y del cultivo bacteriológico en el diagnóstico de tuberculosis bovina en México. Veterinaria México OA. 2015;2(3). doi: 10.21753/vmoa.2.3.348.

La tuberculosis bovina es una enfermedad compleja, difícil de diagnosticar, controlar y erradicar y tiene un impacto negativo en el sector ganadero. El objetivo de este estudio fue evaluar el grado de concordancia entre los resultados del examen histopatológico y del cultivo bacteriológico en el diagnóstico de lesiones de tuberculosis bovina realizado en los laboratorios certificados por la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación (SAGARPA) a nivel nacional, en el periodo comprendido entre enero de 2009 y diciembre de 2012 en México. La información se obtuvo de 10,818 muestras de bovinos de matanza regular, a las cuales no se los sometió a la prueba de tuberculina, pero  tenían lesiones que sugerían tuberculosis. Esas muestras se enviaron a diez laboratorios autorizados. Mediante el coeficiente kappa de Cohen, se midió la confiabilidad del diagnóstico; se obtuvo una concordancia general entre los resultados del examen histopatológico y del cultivo bacteriológico de k= 0.633, con un intervalo de confianza (IC) del 95% (0.618–0.649), lo cual indica una concordancia buena entre las dos pruebas a nivel nacional. El laboratorio de Chihuahua obtuvo el valor más alto de kappa [k = 0.784; IC del 95% (0.754–0.814)] y el laboratorio de la Región Lagunera en el estado de Coahuila obtuvo un valor bajo de concordancia [k = 0.334; IC del 95% (0.257–0.412)]. El número de muestras positivas en el cultivo bacteriológico fue bajo en Tamaulipas (21 muestras), Sonora (41 muestras) y Yucatán (45 muestras), ya que la prevalencia de tuberculosis en esos Estados es ≤ 0.04%. El grado de discordancia en algunos laboratorios involucra factores como la falta de recursos económicos, de infraestructura y de capacitación. El procedimiento correcto para la toma, conservación, envío y procesamiento de las muestras es crucial para optimizar los resultados bacteriológicos e histopatológicos y, así, llegar al correcto diagnóstico de la tuberculosis bovina y de diagnósticos diferenciales.

Cuadro 4. Kappa con un intervalo de 95% de confianza, y valores mínimos y máximos de kappa.
Palabras clave:
Tuberculosis bovina Concordancia Histopatología Bacteriología Kappa de Cohen

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Citas

Acha PN, Szifres B. 2003. Zoonosis y enfermedades transmisibles comunes al hombre y a los animales. 3a ed. Washigton, DC: Organización Panamericana de la Salud.

Albernaz TT, Chavez CM, Limar HD, Silva SN, Cardoso PD, Lopez ATC, Brito FM, Silva BJ, Salvarani MF. 2015. Comparison of the tuberculin test, histopathological examination, and bacterial culture for the diagnosis of tuberculosis (Mycobacterium bovis) in buffaloes (Bubalus bubalis) in Brazil. Tropical Animal Health and Production, 47. DOI: 10.1007/s11250-015-0842-3. http://dx.doi.org/10.1007/s11250-015-0842-3

Araújo CP, Leite CQF, Prince KA, Jorge KSG, Osório ALAR. 2005. Mycobacterium bovis identification by molecular method from post-mortem inspected cattle obtained in abattoirs of Mato Grosso do Sul, Brazil. Memorias del Instituto Oswaldo Cruz, 100:749-752.

Bermudez HR, Renteria ET, Medina BG. 2010. Correlation between histopathological,

bacteriological and PCR diagnosis of bovine tuberculosis. Journal of Animal and Veterinary Advances, 9:2082-2084.

[CANATB] Campaña Nacional para el Control y la Erradicación de la Tuberculosis Bovina en México. 2004. Memorias de la Reunión Anual del Consejo Nacional de Salud Animal. México, DF.

Chakravorty S, Sen MK, Tyagi JS. 2005. Diagnosis of extrapulmonary tuberculosis

by smear, culture, and PCR using universal sample processing technology. Journal of Clinical Microbiology, 43:4357-62.

Efron B, Tibshirani RJ. 1993. An introduction to the bootstrap. New York, Chapman & Hall.

Estrada-Chávez C, Otero FD, Díaz CA, Villegas-Sepúlveda N, González RP, Salazar DG. 2004. Concordancia de la PCR y métodos rutinarios para el diagnóstico de tuberculosis bovina. Veterinaria México, 35:225-236.

Frankena K, White WP, O’Keeffe J, Costello E, Martin WS, Grevenhof IV. 2007. Quantification of the relative efficiency of factory surveillance in the disclosure of tuberculosis lesions in attested Irish cattle. Veterinary Record, 161:679-684.

Gilchrist MJ. 2009. Weighted 2 × 2 kappa coefficients: recommended indices of diagnostic accuracy for evidence-based practice. Journal of Clinical Epidemiology, 62:1045-1053.

Hernandez J, Baca D. 1998. Effect of tuberculosis on milk production in dairy cows. Journal of the American Veterinary Medical Association, 213(6):851-4.

Kaneenea JB, Millera AN, Meyerb R. 2006. Abattoir surveillance: The U.S. experience. Veterinary Microbiology, 112:273-282.

Kraemer CH, Vyjeyanthi S, Periyakoil, Art Noda. 2002. Kappa coefficients in

medical research. Statistics in Medicine, 21:2109-2129.

Lantz CA, Nebenzahl E. 1996. Behavior and interpretation of the k statistic: resolution of the two paradoxes. J Clin Epidemiol. 49(4):431-4.

Latini O, Canal AM, Ferrara ME, Sequeira MD, Bagnaroli RV, Torres P. 1997. Confiabilidad en la determinación de prevalencia de infección por Mycobacterium bovis en ganado bovino por decomisos en frigoríficos. Archivos de medicina veterinaria, 29(2):197-204.

[NOM-031] Norma Oficial Mexicana [21 ago 1998]. NOM-031-ZOO-1995. Campaña Nacional contra la Tuberculosis Bovina (Mycobacterium bovis). DF, México: DOF- SAGARPA.

O’Reilly LM, Daborn CJ. 1995. The epidemiology of Mycobacterium bovis infections in animals and man. A review. Tubercle and Lung Disease, 76:1-46.

[OIE] World Organisation for Animal Health. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. 2014. http://www.oie.int/en/ [10 sep 2014].

Organización Panamericana da Saúde (OPS-OMS), Universidade CES Colombia. 2014. Epidat: programa para análisis epidemiológico de datos. Versión 4.1. España: Consellería de Sanidade, Xunta de Galicia. http://dxsp.sergas.es [15 oct 2014].

Pérez-Guerrero L, Milián-Suazo F, Arriaga-Díaz C, Romero-Torres C, Escartín-Chávez M. 2008. Epidemiología molecular de las tuberculosis bovina y humana en una zona endémica de Querétaro, México. Salud pública México, 50(4):286-291.

Pérez PF, Ortiz BW, Desmecht D, Coral M, Ortiz J, Portaels F, Rigouts L, Linder A. 2011. Post-mortem examination and laboratory-based analysis for the diagnosis of bovine tuberculosis among dairy cattle in Ecuador. Preventive Veterinary Medicine, 101:65-72.

Pinto PSA, Faria JE, Viloria MIV, Bevilacqua PD, 2002. Examen microbiológico da tuberculose como subsídio à inspeção post-mortem de bovinos. Revista Brasileira de Saúde e Produção Animal, 3:10-15.

[SAGARPA] Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación. Análisis de los procesos de exportación de ganado bovino en México. 2013. http://www.sagarpa.gob.mx/Paginas/default.aspx [25 jun 2013].

[SAGARPA] Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación. Prevalencias en Tuberculosis. Cierre enero-diciembre 2014. http://www.senasica.gob.mx/?id=6246 [25 jun 2015].

[SENASICA] SAGARPA, Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria. 2015. Guía para el seguimiento epidemiológico de la tuberculosis bovina. http://www.senasica.gob.mx/?id=4367 [1 abr 2015].

[SIAP] Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. Población Ganadera. http://www.siap.gob.mx/poblacion-ganadera/ [2 de junio 2015].

Shitaye JE, Getahun B, Alemayehu T, Skoric M, Treml F, Fictum P, Vrbas V, Pavlik I. 2006. A prevalence study of bovine tuberculosis by using abattoir meat inspection and tuberculin skin testing data, histopathological and IS6110 PCR examination of tissues with tuberculous lesions in cattle in Ethiopia. Veterinární medicina, 51:512-522.

Shittu A, Cifton-Hadley RS, Ely ER, Upton PU, Downs SH. 2013. Factors associated with bovine tuberculosis confirmation rates in suspect lesions found in cattle at routine slaughter in Great Britain, 2003-2008. Preventive Veterinary Medicine, 110:395-404.

[USDA] USDA, APHIS. 2009. Veterinary Services Memorandum No. 552.41. Guidelines for Tuberculosis (TB) Reviews in Mexico.

Valencia LG, Anda HJ, Lira SE. 1997. Diagnóstico post mortem en decomisos sugestivos a tuberculosis en ganado bovino sacrificado en Baja California. Veterinaria México, 28(3):1-7.

Waters RW, Palmer VM, Buddle MB, Vordermeier MH. 2012. Bovine tuberculosis vaccine research: Historical perspectives and recent advances. Vaccine, 30(16):2611-2622.